Bioagro ISSN: Universidad Centroccidental Lisandro Alvarado Venezuela


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1 Bioagro ISSN: Universidad Centroccidental Lisandro Alvarado Venezuela Pavone, Domenico; Dorta, Blas Efecto de agroquímicos sobre el desarrollo del hongo entomopatógeno Nomuraea rileyi y su virulencia sobre Spodoptera frugiperda Bioagro, vol. 22, núm. 2, mayo-agosto, 2010 Universidad Centroccidental Lisandro Alvarado Barquisimeto, Venezuela Disponible en: Cómo citar el artículo Número completo Más información del artículo Página de la revista en redalyc.org Sistema de Información Científica Red de Revistas Científicas de América Latina, el Caribe, España y Portugal Proyecto académico sin fines de lucro, desarrollado bajo la iniciativa de acceso abierto

2 The entomopathogenic fungus N. rileyi has great potential to be used in Integrated Pest Efecto de agroquímicos sobre el desarrollo del hongo entomopatógeno Nomuraea rileyi y su virulencia sobre Spodoptera frugiperda Domenico Pavone 1 y Blas Dorta 2 1 Lab. Biotecnología Aplicada, Dpto. de Biología, Facultad de Ciencias y Tecnología, Universidad de Carabobo. Campus de Bárbula, estado Carabobo. Venezuela. 2 Laboratorio de Procesos Fermentativos, Centro de Biología Celular, Instituto de Biología Experimental, Universidad Central de Venezuela. Caracas. Venezuela. RESUMEN El hongo entomopatógeno N. rileyi posee un gran potencial para ser utilizado en programas de control de Spodoptera frugiperda (gusano cogollero), evidenciado por las epizootias generadas en varias zonas productoras de maíz en Venezuela. La eficacia de los productos experimentales disponibles, basados en N. rileyi, depende de la formulación de los mismos, siendo una de las principales áreas de interés la compatibilidad del hongo con los agroquímicos empleados, lo que permite integrar varias técnicas de control. Se evaluó el efecto de algunos agroquímicos, comúnmente usados en cultivos de maíz, sobre el crecimiento de N. rileyi en medios agarizados, así como sobre su virulencia frente a larvas de S. frugiperda. En general, el efecto dependió en gran medida de la concentración del producto utilizado. Los insecticidas Lannate y Mimic no interfirieron con el desarrollo del hongo a ninguna concentración. El adherente Nu Film 17; los insecticidas Atabron y Karate; y el herbicida Accent, afectaron el crecimiento del hongo sólo cuando fueron usados en diluciones 1/10 del producto comercial puro. El fungicida Vitavax afectó la actuación del hongo en todas las concentraciones utilizadas (diluciones 1/10, 1/100 y 1/1000 del producto comercial). Los bioensayos sugieren un efecto sinérgico entre el hongo y los insecticidas Karate y Mimic para el control del insecto, lo cual permitiría integrar estas técnicas de control y disminuir el uso de productos tóxicos en campo, contribuyendo con el manejo de la resistencia a agroquímicos. En el trabajo también se discute la importancia de complementar estos ensayos con información de tipo ecológico para garantizar aplicaciones eficientes. Palabras clave adicionales: Compatibilidad, plaguicida, biocontrol, Zea mays Effect of agrochemicals on development of the entopathogenic fungus Nomuraea riley and its virulence on S. frugiperda ABSTRACT

3 formulations in order to increase commercial products efficacy. One of the most important areas is fungal compatibility with chemicals commonly used in pest control. Compatibility of N. rileyi with certain chemical pesticides was evaluated. In general, the compatibility was dose-dependent or not affected at all. The insecticides Lannate and Mimic were ineffective at any concentration tested (1/10 to 1/1000 dilutions of the commercial product); the insecticides Atabron, Karate, the adherent Nu Film 17, and the herbicide Accent affected the fungus only at high concentrations (1/10 dilution of the commercial product), the fungicide Vitavax affected the fungus at any concentration (dilutions 1/10, 1/100 and 1/1000 of the commercial produtc). The bioassays suggest a synergistic effect between the fungus and some of the chemicals evaluated (Karate and Mimic) for the control of the insect, which would allow decreasing the use of toxic products in field, contributing with resistance pest management to chemicals products. It is also discussed the importance to complement these assays with ecological information to make effective applications. Additional key words: Compatibility, pesticide, biocontrol, Zea mays Recibido: Abril 1, 2009 Aceptado: Junio 11, 2010 INTRODUCCIÓN Los hongos entomopatógenos juegan un papel muy importante en el control de plagas debido a su forma de acción, su fácil aplicación y la capacidad de generar epizootias en condiciones de campo (Ignoffo, 1981; Alves, 1986). El hongo entomopatógeno Nomuraea rileyi (Farlow) Samson ha sido reportado en varias localidades de América, incluida Venezuela, por ser un importante controlador de larvas parásitas como Spodoptera frugiperda Smith (Lepidoptera: Noctuidae) en plantaciones de maíz (Ignoffo et al., 1976; García y Clavijo, 1985). N. rileyi ha eliminado hasta el 80% de la población de larvas de S. frugiperda en bioensayos de laboratorio (Pavone et al., 2009), lo cual lo convierte en una herramienta con gran potencial de uso en programas de control. En los casos en que es necesario aplicar conjuntamente agroquímicos y bioplaguicidas, el producto químico no debe ejercer efectos adversos sobre el desarrollo del agente biológico, ya que si esto ocurriera, el bioplaguicida no cumpliría con su función, acarreando pérdidas económicas y de tiempo al productor. El estudio de la compatibilidad entre agentes biológicos y químicos de control es una de las principales áreas de investigación dentro de los programas de manejo integrado de plagas, MIP (García e Ignoffo, 1979; Morjan et al., 2002; Sosa-Gomez et al., 2003). La principal causa de la incompatibilidad entre estos agentes es que el producto químico afecta de alguna forma el desarrollo del patógeno, inhibiendo la germinación de las esporas de forma temporal o permanente. Se han realizado muchos estudios de compatibilidad entre N. rileyi y algunos agroquímicos y se ha demostrado el mayor efecto inhibitorio sobre el hongo por los fungicidas Bravo (Horton et al., 1980), Maneb y Propineb (Tang y Hou, 1998); mientras que no ejercen efectos letales fungicidas como Captafol, Zineb, Chlorothalonil, Fosetyl y Ziram (Gopalakrishnan y Mohan, 2000), herbicidas como Oxyfluorfen, Fluroxypyr, glyphosato, Glyphosato + Fluroxypir, Pendimentalin, 2,4-D, Trifluralin y Buthaclor, e insecticidas como Chlorpyrifos, Bifenthrin, Carbofuran, Methomyl, Buprofezin, Mevinphos, Decamethrin y Sumicidin (Tang y Hou, 1998), Monocrotophos, Phosphamidon y Dimetoato (Gopalakrishnan y Mohan, 2000) y Lannate (Ignoffo et al., 1975). En contraste, se ha encontrado que los insecticidas Quinalphos, Carbaryl, Endosulfan y Fenvalerate y los fungicidas Captan y Sulphur afectan a N. rileyi sólo a altas concentraciones (Gopalakrishnan y Mohan, 2000). El Benomilo y sulfato de cobre tienen poco efecto sobre N. rileyi, mientras que Manzate, Dodine y Thiabendazol afectan en gran medida (Luz et al., 2007). Con respecto a la esporulación de N. rileyi, Triclorfon la reduce y Profenofos y Endosulfan la inhiben totalmente, mientras que Permetrin y Diflubenzuron no la afectan (Silva et al., 1993). Es evidente que la naturaleza de la sustancia y la concentración de la misma son parámetros fundamentales que determinan la compatibilidad con el hongo.

4 y su efecto sobre el gusano cogollero del maíz que permitan la incorporación del entomopatógeno a los correspondientes programas MIP. MATERIALES Y MÉTODOS Se utilizó el aislado LPFIBE-3 del hongo entomopatógeno N. rileyi, suministrado por el Centro Venezolano de Colecciones de Microorganismos, Instituto de Biología Experimental, Facultad de Ciencias, Universidad Central de Venezuela. Este aislado fue obtenido en una plantación de maíz en la finca Las Guacamayas del estado Guárico, a partir de larvas de S. frugiperda. El hongo fue mantenido en el laboratorio mediante subcultivo periódico en agar dextrosa papa (PDA). El crecimiento y esporulación de N. rileyi se llevó a cabo en placas de Petri conteniendo agar PDA esterilizado en autoclave a 121 C durante 15 minutos. Los inóculos de N. rileyi para ser usados en los ensayos de compatibilidad, los cuales estaban constituidos por una suspensión de esporas, fueron preparados a partir de cultivos esporulados de 10 días, mediante adición de Tween 80 al 0,1 % y agitación con barra magnética. La concentración de esporas fue determinada mediante el uso de una cámara de Neubauer y un microscopio óptico a una magnificación de 400X. Las larvas de S. frugiperda utilizadas en los bioensayos fueron obtenidas a partir de una cría desarrollada en el laboratorio, según el protocolo propuesto por Parra (1986). Los agroquímicos utilizados (Cuadro 1) fueron preparados a diferentes concentraciones que incluyeron diluciones en agua destilada estéril 1/10, 1/100 y 1/1000 del producto comercial puro para los ensayos en medios agarizados, o la dosis recomendada por el fabricante y diluciones 1/10 y 1/100 a partir de ésta, para los ensayos con S. frugiperda. La compatibilidad entre N. rileyi y los agroquímicos fue evaluada mediante el crecimiento de N. rileyi en medio agarizado en presencia del hongo y los productos químicos. Sin embargo, dado que esta evaluación in vitro podría no ser suficiente para predecir lo que ocurriría en condiciones de campo (Ambethgar, 2009), se realizaron adicionalmente bioensayos con S. frugiperda. Para el primer procedimiento se utilizaron placas de Petri con PDA, sembradas con alícuotas de 0,1 ml de una suspensión de esporas de N. rileyi a una concentración de 10 7 esporas ml -1, con el objeto de garantizar un crecimiento homogéneo del hongo sobre toda la placa. Inmediatamente después de la siembra, se colocaron en las placas discos de papel de filtro estériles con diámetro de 0,5 cm. Sobre cada disco de papel se añadieron 5 μl de las diluciones 1/10, 1/100 y 1/1000 a partir del producto comercial puro, excepto en los discos control a los cuales se les añadió Tween 80 al 0,1% estéril. Los resultados fueron evaluados cualitativamente mediante la presencia (+) o ausencia (-) de un halo de inhibición alrededor del punto de aplicación del agroquímico. Para el caso de los bioensayos con S. frugiperda se utilizaron larvas del segundo instar del

5 En un trabajo con el hongo N. rileyi realizado por Ignoffo et al. (1975) para comprobar su compatibilidad con agroquímicos donde haciendo ensayos in vitro verificó la compatibilidad de N. rileyi con varios fungicidas, herbicidas e insecticidas, de los cuales sólo el insecticida Lannate fue incluido en el presente estudio. Los resultados coinciden con los obtenidos en los ensayos con medios agarizados, donde las evidencias indican que N. rileyi es compatible con el insecticida Lannate. Ricinus communis L. (tártago) de 2,5 cm de diámetro, el cual funcionó como dieta y vehículo de aplicación. Para cada tratamiento los discos fueron sumergidos en la respectiva dilución del agroquímico (dosis recomendada y diluciones 1/10 y 1/100 a partir de ésta), la cual fue previamente suplementada con esporas de N. rileyi a la concentración de 10 7 esporas ml -1. El control negativo consistió en suministrar discos de R. communis sumergidos en Tween 80 al 0,1% estéril. Las larvas fueron revisadas y alimentadas a diario hasta su muerte o hasta que alcanzaran el estado de pupa. Los ensayos se realizaron en cámaras termostatizadas a 26 +/- 2 C, saturadas en humedad y en presencia de luz fluorescente continua. A partir de los datos de mortalidad obtenidos en los ensayos con S frugiperda se realizaron los respectivos análisis de Probit para calcular los tiempos letales 50 y 95 (TL 50, TL 95 ) y los intervalos de confianza. La existencia de diferencias significativas entre los distintos tratamientos se verificó mediante la comparación de los respectivos intervalos de confianza; de esta manera, la superposición de los mismos indicó la no existencia de diferencias significativas. Para ello se utilizó el paquete estadístico Probit Analysis Program (Raymond, 1985). RESULTADOS Y DISCUSIÓN Compatibilidad en medios agarizados. El agroquímico con mayor efecto adverso sobre el desarrollo de N. rileyi fue el fungicida Vitavax (Cuadro 2) ya que fue el único que presentó el halo de inhibición y afectó su crecimiento en todas las concentraciones empleadas, mientras que con los insecticidas Lannate y Mimic y el herbicida Accent no se observaron halos en ninguna de las concentraciones ensayadas. El halo de inhibición es un indicador del efecto inhibitorio ejercido por el agroquímico sobre el desarrollo del hongo, ya sea afectando el proceso de germinación o el crecimiento vegetativo. En el caso del adherente Nu film 17, los insecticidas Atabron y Karate, y el herbicida Accent, sólo se observó un efecto adverso a la dilución 1/10 del producto comercial, mientras que el surfactante Surfatron y el aceite emulsionado Rocío Blanco no afectaron el desarrollo del hongo a las concentraciones utilizadas.

6 efecto de Karate sobre la virulencia de N. rileyi son presentados en la Figura 1. Se utilizó la dosis recomendada por el fabricante (2 ml L -1 ) y diluciones a partir ésta, ya que a concentraciones más altas la mortalidad de S. frugiperda fue del 100 % en los primeros días de ensayo, enmascarando el efecto del hongo. Cuando se utilizó la concentración recomendada (2 ml L -1 ) el insecticida eliminó el 100 % de la población de S. frugiperda con un TL 50 de 0,78 días y TL95 de 2,27 días, independientemente de la presencia del hongo. A la dilución 1/10 de la dosis recomendada (0,2 ml L -1 ) se observó una mortalidad de casi 40 % en los primeros 5 días, con un TL50 de 4,48 días en el tratamiento sin hongo. En este caso el valor de TL95 fue muy alto (130 días) debido a que nunca se alcanzó una mortalidad mayor al 40 %, creando la imposibilidad de calcular los respectivos intervalos de confianza (datos faltantes en las tablas de datos de las figuras 1, 2 y 3). Sin embargo, cuando N. rileyi fue agregado como tratamiento junto con el insecticida a la concentración 0,2 ml L -1, se obtuvo una mortalidad de 100 %, con un TL50 de 5,86 días y TL95 de 7,50 días, valores muy similares a los obtenidos en los tratamientos con N. rileyi mezclado con Karate a la concentración de 0,02 ml L -1 y N. rileyi solo. Resulta evidente a partir de los resultados que el Karate no interfirió con la actuación del hongo, incluso después de haber eliminado el 40 % de la población en la concentración intermedia, mientras que en el tratamiento que sólo contenía el insecticida a esta concentración la mortalidad se mantuvo en 40 %, diferencia que se observa si se compara los TL 95 de cada tratamiento (7,5 y 130 días, respectivamente) con diferencias significativas entre éstos. A una concentración de 0,02 ml L -1, el insecticida mató al 10 % de la población de S. frugiperda, actuando N. rileyi sobre el otro 90 % en los siguientes siete días. Los resultados sugieren que en dosis subletales (diluciones 1/10 y 1/100) el Karate es compatible con N. rileyi. Con estos resultados no quedaba claro si el hongo era compatible con el insecticida a la concentración recomendada o mayores a ésta, pero esto pudo evidenciarse en los ensayos con medios agarizados (Cuadro 2), donde se probaron diluciones 1/10, 1/100 y 1/1000 del producto comercial puro y no a partir de la dosis recomendada de 2 ml L-1, y los resultados demuestran que a diluciones 1/10 y 1/100 del producto comercial, el hongo se ve afectado por Karate, puesto en evidencia por el halo de inhibición en los puntos donde se colocó el insecticida. A concentraciones más bajas (diluciones 1/1000 del producto comercial), no se observó ningún efecto sobre el desarrollo de N. rileyi.

7 En el caso de Mimic (Figura 2), los resultados mostraron una tendencia similar a la observada en los ensayos con Karate. A la concentración recomendada por el fabricante

8 Uno de los problemas más graves a la hora de hacer aplicaciones de agroquímicos es la selección de organismos resistentes a estos productos, debido a la aplicación indiscriminada y repetitiva de los mismos. Para ayudar a enfrentarlo se ha establecido el llamado manejo de la resistencia en insectos, como una extensión complementaria al manejo integrado de plagas, aplicando una serie de medidas que podrían evitar o al menos retrasar la aparición de la resistencia (Regupathy, 1995). Así, la aplicación de agroquímicos en conjunto con hongos entomopatógenos compatibles, puede mejorar la eficiencia del control, disminuir la cantidad de insecticida requerido, minimizar la contaminación ambiental y retrasar la aparición de resistencia a los agroquímicos (Ambethgar, 2009). La aplicación de hongos entomopatógenos con dosis bajas de insecticidas, es de gran ayuda para evitar la aparición de resistencia (Ramaraje Urs et al., 1967; Fargues, 1975), siendo incluso más efectivos en el control (Anderson et al., 1989). Algunos insecticidas pueden actuar como agentes sinérgicos en el desarrollo de enfermedades de insectos causadas por hongos, por lo que son denominados factores epizootiológicamente relevantes (Jacobson et al., 2001). En otros trabajos se ha sugerido una acción sinérgica de N. rileyi con insecticidas sobre Spodoptera litura (Lepidoptera: Noctuidae) (Manjula y Murthy, 2005), recomendando aplicaciones al inicio de la epizootia natural para incrementar la mortalidad en la población de S. litura. Los insecticida que dura aproximadamente cuatro días, cuando comenzó a actuar el hongo. A esta concentración y sin la presencia de N. rileyi, se observó una mortalidad de 60 %. Los datos de TL 50 a esta concentración no presentaron diferencias significativas independientemente de la presencia del hongo (TL 50 = 4,31 días; TL 50 Nr = 4,52 días); sin embargo, si se comparan los TL 95 (TL 95 = 11,2 días; TL 95 = 5,54 días) sí se evidencian diferencias estadísticas. Cuando N. rileyi fue agregado como tratamiento junto con el insecticida a la concentración de 0,125 ml L-1, se obtuvo un TL 50 de 3 días y un TL 95 de 5,54 días, valores muy similares a los obtenidos en el tratamiento con N. rileyi solo y con la menor concentración de insecticida utilizada (0,0125 ml L -1 ), sin diferencias significativas. Para la dosis más baja (0,0125 ml L-1), se observó que el insecticida no tuvo efecto sobre S. frugiperda, estando la curva de este tratamiento completamente superpuesta con la del control. Estos resultados indican que a dosis por debajo de la recomendada por el fabricante (0,125 ml L-1 y 0,0125 ml L-1), donde no se observó ningún efecto inhibitorio, el insecticida Mimic si es compatible con N. rileyi. En placas con medios agarizados no se observó ningún efecto sobre el desarrollo del hongo a concentraciones mayores a 1,25 ml L-1 (Cuadro 2). El fungicida Vitavax sí afectó en gran medida el desarrollo de N. rileyi en los ensayos con S. frugiperda, evidenciándose esto por las diferencias notables en los TL 50 obtenidos (5,7 días para el hongo solo y entre 8 a 9 días para los tratamientos con el agroquímico) (Figura 3). Si bien a partir de los resultados obtenidos no es posible asegurar que el fungicida mató al hongo, resulta evidente que sí retrasó la actuación del mismo. Los datos del presente ensayo fueron recabados hasta el día siete, lo cual imposibilita saber que hubiera ocurrido en días posteriores con la mortalidad de la población. Los datos obtenidos para la dosis recomendada (VN1, 10 ml L -1 ) arrojan un TL 50 muy bajo (1,23 días); sin embargo, no se observó presencia del hongo sobre las larvas muertas por lo que aparentemente estos individuos no murieron por efecto del hongo sino más probablemente por falta de alimentación, pues se observó buena parte de la dieta sin consumir y se infiere que la presencia del agroquímico a esta concentración habría disminuido el apetito de las larvas. Estos resultados coinciden con los obtenidos en los ensayos con medios agarizados (Cuadro 2). El efecto de Lannate y Atabron sobre S. frugiperda fue mucho más fuerte, observándose una mortalidad del 100 % al segundo día de ensayo, a diluciones 1/10 y 1/100 de la dosis recomendada. Este hecho no permitió observar el efecto del hongo sobre el insecto (datos no mostrados). Sin embargo, la compatibilidad de N. rileyi con estos agroquímicos se puso en evidencia en los ensayos con medios agarizados (Cuadro 2). En el caso del herbicida Accent, el adherente Nu Film 17 y el surfactante Surfatron, los ensayos con S. frugiperda mostraron la misma tendencia de mortalidad en todas las concentraciones utilizadas (datos no mostrados) independientemente de la presencia del hongo, coincidiendo con los resultados de compatibilidad obtenidos en los ensayos con los medios agarizados (Cuadro 2).

9 La integración de estas dos medidas de control permitiría un mejor manejo de las poblaciones plagas con menos aplicaciones de agroquímicos y menor impacto socioambiental y minimizando la posibilidad de selección de organismos resistentes. Si bien el conocimiento del efecto in vitro de un agroquímico sobre un organismo biocontrolador es una información fundamental, no determina por completo el éxito de la aplicación conjunta. Algunos agroquímicos, como el fungicida Benlate por si solo y en combinación con Methyl Parathion o Carbaryl, son capaces de inhibir las epizootias naturales de N. rileyi, pudiéndose reducir las condiciones para la iniciación de la epizootia durante al menos tres semanas (Johnson et al., 1976). La combinación de fungicidas con insecticidas parece ser particularmente inhibitoria, posiblemente debido a las cualidades del fungicida aunado a la reducción en la población del hospedador necesaria para el establecimiento del inóculo que dará como resultado la epizootia. El momento de aplicación del agroquímico es un factor crítico, siendo en los momentos preepizooticos cuando más se observa el efecto inhibitorio (Horton et al., 1980). Estos hallazgos evidencian la necesidad de una evaluación meticulosa de los métodos de control de plagas, materiales y tiempo de aplicación, por lo que resulta importante que en los programas de manejo integrado que incluyan el uso de hongos entomopatógenos, deben ser consideradas las interacciones entre el insecto, el patógeno, los plaguicidas y las condiciones ambientales. Este tipo de estrategias va más allá de una simple determinación de compatibilidad entre el hongo y el agroquímico. La información es de gran importancia, pero no es la única que debe ser tomada en cuenta. Factores como la densidad poblacional son fundamentales para el normal desarrollo del hongo. Si se aplica un insecticida en conjunto con algún hongo entomopatógeno y el primero es capaz de disminuir en gran medida la población del insecto, la adición del producto biológico a la mezcla podría ser en vano, ya que el hongo no tendría a la disposición ninguna población para atacar. Es imprescindible que antes de realizar este tipo de mezclas, se tenga en cuenta toda la información necesaria (compatibilidad in vitro e información ecológica) para poder obtener el máximo provecho a cada aplicación. CONCLUSIONES Los resultados indican que son factibles aplicaciones conjuntas entre algunos agroquímicos y N. rileyi que pueden ayudar a mejorar la efectividad de ambos agentes de control. La existencia de un efecto sinérgico cuando se aplica el hongo con dosis subletales del agroquímico puede tener implicaciones importantes en el impacto que las actividades agrícolas tienen sobre el ambiente y sobre la dinámica de las poblaciones de insectos plaga. El uso de menores cantidades de agroquímicos permitirá obtener alimentos menos contaminados, una mayor protección del ambiente y reducir la tasa de selección de organismos resistentes a estos productos. AGRADECIMIENTO Trabajo financiado con fondos del Programa de Beca-Crédito otorgado a Domenico Pavone y del Proyecto S a cargo del Dr. Blas Dorta, ambos provenientes del Fondo Nacional de Ciencia y Tecnología, FONACIT. LITERATURA CITADA 1. Alves, S Fungos Entomopatogênicos. In: Alves, S. (ed.). Controle microbiano de insetos. Editorial Manole. São Paulo. pp Ambethgar, V Potential of entomopathogenic fungi in insecticide resistance management (IRM): A review. Journal of Biopesticides 2(2): Anderson, T., A. Hajek, D. Roberts, H. Preisler y J. Robertson Colorado potato beetle (Coleoptera: Chrysomelidae): Effects of combinations of Beauveria bassiana with insecticides. Journal of Economic Entomolog, 82:

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